Contracaecum multipapillatum (Nematoda: Anisakidae) en peces de aguas continentales de Guanacaste, Costa Rica e Izabal, Guatemala

Contracaecum multipapillatum (Nematoda: Anisakidae) in inland water fish from Guanacaste, Costa Rica and Izabal, Guatemala

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Luis Felipe Choc-M
Universidad de San Carlos de Guatemala, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Unidad de Parasitología, Guatemala
Ana Jiménez-R
Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica
Donald Arguedas-C
Universidad Técnica Nacional, Laboratorio para Aguas y Reproducción de Especies Dulceacuícolas, Guanacaste, Costa Rica
Gaby Dolz
Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica

Resumen

Contracaecum multipapillatum infecta peces como hospedadores intermediarios y al ser humano como hospedador accidental por consumo de carne de pescado cruda o semi cocinada. Este riesgo para la salud humana hace importante determinar su prevalencia, intensidad de infección y ubicación anatómica en peces destinados al consumo mediante pesca artesanal; y la influencia de parámetros físicoquímicos del agua sobre la infección en peces. Se recolectaron 214 peces en 6 ríos de Cañas, Guanacaste, Costa Rica y 203 peces en el Lago de Izabal y Río Dulce, Izabal, Guatemala. En los sitios de pesca se tomaron parámetros físicoquímicos del agua (temperatura, pH y oxígeno disuelto). La prevalencia de infección fue 16.8% y 25.1% en Guanacaste e Izabal, respectivamente, encontrándose 105 larvas de tercer estadio (L3) en 36 peces de Guanacaste y 135 L3 en 51 peces de Izabal. Se observó afinidad de L3 por órganos viscerales (22.4% en Guanacaste – 25.1% en Izabal) y menor por tejido muscular (2.0% en Guanacaste – 1.0% en Izabal). La intensidad de infección directamente proporcional con la talla y peso de los peces (una larva en 13 peces con peso y talla media de 66.7 g y 17.5 cm en Guanacaste, y siete peces de 214.9 g y 28.4 cm en Izabal; y 14 larvas en un pez de 148.8 g y 24 cm en Guanacaste y 12 larvas en un pez de 260 g y 40 cm en Izabal). No se observó asociación entre parámetros fisicoquímicos del agua y susceptibilidad de peces a infección.

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Biografía del autor/a / Ver

Luis Felipe Choc-M, Universidad de San Carlos de Guatemala, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Unidad de Parasitología, Guatemala

Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica.
Universidad de San Carlos de Guatemala, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Unidad de Parasitología, Guatemala.

Ana Jiménez-R, Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica

Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica.
ana.jimenez.rocha@una.cr
https://orcid.org/0000-0001-5416-9029

Donald Arguedas-C, Universidad Técnica Nacional, Laboratorio para Aguas y Reproducción de Especies Dulceacuícolas, Guanacaste, Costa Rica

Universidad Técnica Nacional, Laboratorio para Aguas y Reproducción de Especies Dulceacuícolas, Guanacaste, Costa Rica.
darguedas@utn.ac.cr
https://orcid.org/0000-0002-0127-4754

Gaby Dolz, Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica

Universidad Nacional, Posgrado en Ciencias Veterinarias Tropicales, Maestría en Enfermedades Tropicales, Heredia, Costa Rica.
gaby.dolz.wiedner@una.ac.cr
https://orcid.org/0000-0002-9566-5130

Referencias / Ver

Motamedi M, Iranmanesh A, Teimori A, Mahmoud S, Nasibi S. Detection of Contracaecum multipapillatum (Nematoda: Anisakidae) in the indigeneous killfish Aphanius hormuzensis (Teleostei; Aphaniidae) and its histopathological effects: A review or Iranian Aphanius species parasites. J Appl Ichthyol. 2018; 35(2):1-12. https://doi.org/10.1111/jai.13848 DOI: https://doi.org/10.1111/jai.13848

Mancinni M, Biolé F, Salinas V, Guagliardo S, Tanzola R, Morra G. Prevalence, Intensity and Ecological aspects of Contracaecum sp. (Nematode: Anisakidae) in freshwater fish of Argentina. Neotrop. Helminthol. 2014; 8(1):111-122. http://sisbib.unmsm.edu.pe/BVRevistas/neohel/v8n1/pdf/a10v8n1.pdf DOI: https://doi.org/10.24039/rnh201481904

García ML, Salguero G, García L, Osorio D, y Perez-Ponce G. Endohelminths of some species of fishes from Lake Xochimilco, México. Rev Mex Biodivers. 2016. 87(4):1360-1364. https://doi.org/10.1016/j.rmb.2016.06.018 DOI: https://doi.org/10.1016/j.rmb.2016.06.018

Valle I, Molina D, Benítez R, Hernández S, Adroher F. Early development and life cycle of Contracaecum multipapillatum s.l. from a brown pelican Pelecanus occidentalis in the Gulf of California, Mexico. Dis Aquat Org. 2017; 125:167-178. https://doi.org/10.3354/dao03147 DOI: https://doi.org/10.3354/dao03147

Chiclla A, y Tantas D. Infection of Contracaecum sp. larvae (NEMATODA: ANISAKIDAE) in Tilapia (Oreochromis niloticus) of Perú. Biologys. 2015. 13(2):419-427. http://sisbib.unmsm.edu.pe/BVRevistas/biologist/v13_n2/pdf/a21v13n2.pdf

Maniscalchi M, Lemus D, Marcano Y, Edgar N, Marianella Z, Narváez N. Larvas anisakidae en peces del género mugil comercializados en mercados de la región costera nor-oriental e insular de Venezuela. Saber. 2015; 27(1):30-38. http://www.scielo.org.ve/pdf/saber/v27n1/art05.pdf

Serrano E, Tantalean M, Quispe M, Casas G. Presencia de larvas de Contracaecum sp. (Nematoda, Anisakidae) en el pez Astronotus ocellatus, destinado al consumo humano en Loreto, Peru. Salud Tecnol Vet. 2015; 3(2):31-34. https://doi.org/10.20453/stv.v3i1.2757 DOI: https://doi.org/10.20453/stv.v3i1.2757

Menghi C, Comunaleb E, Gattaa, C. Anisakiosis: primer diagnóstico en Buenos Aires, Argentina. Rev Soc Ven Microbiol. 2011; 31(1):71-73. http://190.169.30.98/ojs/index.php/rev_vm/article/download/3087/2952

Menghi C, Gatta C, Arias L, Santonia G, Nicola F, Smayevsky J, et al. Human infection with Pseudoterranova cattani by ingestion of “ceviche” in Buenos Aires, Argentina. Rev Argent Microbiol. 2019; 1-3. https://doi.org/10.1016/j.ram.2019.06.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ram.2019.06.005

Lim H, Jung B, Cho J, Yooyen T, Shin E, Chai J. Molecular Diagnosis of Cause of Anisakiasis in Humans, South Korea. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(2):342-344. https://doi.org/10.3201/eid2102.140798 DOI: https://doi.org/10.3201/eid2102.140798

Solas M, García M, de las Heras C. Anisakis simplex antigens in fresh and frozen-thawed muscle of anchovies in vinegar. Food Sci Technol Int. 2009. 15(2):139-148. https://doi.org/10.1177/1082013208105171 DOI: https://doi.org/10.1177/1082013208105171

da Silva R, Penha A, Nascimento J, Guerreiro E. Contracaecum larvae: morphological and morphometric retrospective analysis, biogeographay and zoonotic risk in the amazona. Braz J Vet Parasitol. 2019; 28(1):12-32. http://doi.org/10.1590/S1984-29612019002 DOI: https://doi.org/10.1590/s1984-29612019002

D’Amelio S, Cavallero S, Dronen N, Barros N, Paggi L. Two new species of Contracaecum Railliet and Henry 1912 (Nematoda: Anisakidae), C. fagerholmi n. sp. and C. rudolphii F from the brown pelican Pelecanus occidentalis in the northern Gulf of Mexico. Syst Parasitol. Syst Parasitol. 2012; 81(1):1–16. https://doi.org/10.1007/s11230-011-9323-x DOI: https://doi.org/10.1007/s11230-011-9323-x

Bautista C, Monks S, Pulido G, Rodríguez A. Revisión bibliográfica de algunos términos ecológicos usados en parasitología, y su aplicación en estudios de caso. En: Pulido G, Monks S, Lopez M, editores. Estudios en Biodiversidad. Vol 1. Lincoln: Zea E-Books; 2015. https://digitalcommons.unl.edu/cgi/viewcontent.cgi?article=1034&context=zeabook

D’amico P, Malandra R, Costanzo F, Castigliego L, Guidi A, Gianfaldoni D, et al. Evolution of the Anisakis risk management in the European and Italian context. Food Res Int. 2014. 64:348-362. http://dx.doi.org/10.1016/j.foodres.2014.06.038 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2014.06.038

Álvarez A, Méndez Y, Reyes J, Romo C, Hernández G. Nematode parasites in the striped mullet (Mugil cephalus Linnaeus, 1758) in the southern Gulf of California. Lat Am J Aquat Res. 2020. 48(1):106-113. https://doi.org/10.3856/vol48-issue1-fulltext-2326 DOI: https://doi.org/10.3856/vol48-issue1-fulltext-2326

Iglesias L, Benítez R, Adroher F, Valero A. Helminth infection in Mugil incilis from Cartagena de Indias, Colombian Caribbean coast. Helminthologia. 2011. 48(1):36-40. https://doi.org/10.2478/s11687-011-0007-5 DOI: https://doi.org/10.2478/s11687-011-0007-5

Hernández J, Aznar F, Blasco I, García N, Vilora M, Crespo E, et al. Description, microhabitat selection and infection patterns of sealworm larvae (Pseudoterranova decipiens species complex, nematoda: ascaridoidea) in fishes from Patagonia, Argentina. Parasit Vectors. 2013. 6(252):1-15. https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-252 DOI: https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-252

Boyd C. Solar Radiation and Water Temperature. En Boyd, C. E. Water Quality: An Introduction (Segunda ed.). Londres, Inglaterra: Springer International Publishing. 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_2 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_2

Boyd C. Dissolved Oxygen and Other Gases. En Boyd, C. E. Water Quality: An Introduction (Segunda ed.). Londres, Inglaterra: Springer International Publishing. 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_7 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-17446-4_6

Boyd C. Carbon Dioxide, pH, and Alkalinity. En Boyd, C. E. Water Quality: An Introduction (Segunda ed.). Londres, Inglaterra: Springer International Publishing. 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_9 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-17446-4_8

Monks S, Pulido G, Bautista C, Alemán B, Falcón J, Gaytán J. El uso de helmintos parásitos como bioindicadores en la evaluación de la calidad del agua: Lago de Tecocomulco vs. Laguna de Metztitlán, Hidalgo, México. En: Pulido G, Monks S, editores. Estudios científicos en el estado de Hidalgo y zonas aledañas. Vol 2. Lincoln: Zea E-Books; 2013. https://digitalcommons.unl.edu/cgi/viewcontent.cgi?article=1015&context=zeabook

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