Actividad hidrolítica de aislados bacterianos con potencial aplicación en el tratamiento de efluentes de frigorífico
Actividad hidrolítica de aislados bacterianos con potencial aplicación en el tratamiento de efluentes de frigorífico
Barra lateral del artículo
PDF
FLIP
Política de acceso abierto
Esta revista proporciona un acceso abierto a su contenido, basado en el principio de que ofrecer al público un acceso libre a las investigaciones ayuda a un mayor intercambio global del conocimiento. Lo cual implica que los usuarios pueden leer, descargar, almacenar, imprimir, buscar, indexar y realizar enlaces a los textos completos de esta revista. Se permite distribuir los diversos artículos en las versiones post-print y oficial, sin previo permiso del autor o editor, considerando que el fin de este no implica fines comerciales, ni la generación de obras derivadas; Solo se solicita la mención de la fuente así como la autoría.
Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA está distribuido bajo los términos de Creative Commons Attribution 4.0 (https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), El uso, distribución o reproducción está permitido, siempre que se acrediten al autor original y al propietario del copyright y que se cite la publicación original en esta revista, de acuerdo con la práctica académica aceptada. No se permite el uso, distribución o reproducción que no cumpla con estos términos.
Contenido principal del artículo
Resumen
Los efluentes de la industria frigorífica se caracterizan por presentar altas concentraciones de proteínas, grasas y polisacáridos. La degradación de estos compuestos a sus constituyentes monoméricos es realizada por la acción de enzimas extracelulares, producidas y secretadas por bacterias hidrolíticas (BH). En consecuencia, la actividad de estos microorganismos favorece el aumento de las tasas de degradación de la fracción orgánica presente en este tipo de residuos. En el presente estudio, un total de 15 bacterias productoras de enzimas extracelulares fueron aisladas y seleccionadas al presentar un índice de actividad enzimática ? 2,0. De estos 15 aislados, 7 presentaron actividad proteolítica (46,6%), 3 amilolítica (20%), 3 celulolítica (20%) y 2 lipolítica (13,4%). Adicionalmente, fue evidenciado efecto antagónico entre algunos de los aislados seleccionados, indicando su posible desventaja competitiva en condiciones naturales. Se concluye que las BH obtenidas evidencian un potencial promisorio para la optimización de sistemas de tratamiento de aguas residuales procedentes de la industria frigorífica.
Palabras clave:
Descargas
Detalles del artículo
Referencias (VER)
ARNOSTI, C. 2011. Microbial Extracellular Enzymes and the Marine Carbon Cycle. Annual Reviews 3:401-425.
BAZRAFSHAN, E.; MOSTAFAPOUR, F.K.; FARZADKIA, M.; OWNAGH, K.A.; MAHVI; A.H. 2012. Slaughterhouse
Wastewater Treatment by Combined Chemical Coagulation and Electrocoagulation Process. Plos One 7 (8):1-8.
BEN-GIGIREY B, DE SOUSA J.M.V.B, VILLA T.G. (2000). Characterization of biogenic amine-producing
Stenotrophomonas maltophilia strains isolated from white muscle of fresh and frozen albacore tuna. Int J Food
Microbiol 57:19-31.
CAVALEIRO, A.J.; SOUSA, D.Z.; ALVES, M.M. 2010. Methane production from oleate: assessing the bioaugmentation
potential of Syntrophomonas zehnderi.water research 44 (17):4940-4947.
ÇADIRCI B.H.; ÇITAK S. 2005. A Comparison of Two Methods Used for Measuring Antagonistic Activity of Lactic
Acid Bacteria. Pakistan Journal of Nutrition 4 (4): 237-241.
ČATER, M.; FANEDL, L.; MALOVRH, S.; LOGAR, R.M. 2015. Biogas production from brewery spent grain enhanced
by bioaugmentation with hydrolytic anaerobic bacteria. Bioresource technology 186: 261-269.
CHAN, Y.J.; CHONG, M.F.; LAW, C.L.; HASSELL, D.G. 2009. A review on anaerobic–aerobic treatment of industrial
and municipal wastewater. Chemical Engineering Journal 155:1-18.
CHEN, Q.; NI, J.; MA, T.; LIU, T.; ZHENG, M. 2015. Bioaugmentation treatment of municipal wastewater with
heterotrophic-aerobic nitrogen removal bacteria in a pilot-scale SBR. Bioresource technology 183:25-32.
CUNHA, A.; ALMEIDA, A.; COELHO, F.J.R.C.; GOMES, N.C.M.; OLIVEIRA, V.; SANTOS, A.L. 2010. Bacterial extracellular enzymatic activity in globally changing aquatic ecosystems. Current research, technology and education topics in applied microbiology and microbial biotechnology. Badajoz, Spain: Formatex Research Center: 124-135.
FACCHIN, S.; ALVES, P. D.; DE FARIA SIQUEIRA, F.; BARROCA, T. M.; NETTO, J.M.; KALAPOTHAKIS, E. 2013. Biodiversity and secretion of enzymes with potential utility in wastewater treatment. Open Journal of Ecology 3 (1):34-47.
GERARDI, M.H. 2003. The microbiology of anaerobic digesters. John Wiley & Sons. USA.
HANKIN, L.; ANAGNOSTAKIS, S. L. 1975. The use of solid media for detection of enzymes production by fungi.
Mycologia 67 (3): 597-607.
HERRERO, M.; STUCKEY, D.C. 2014. Bioaugmentation and its application in wastewater treatment: A review.
Chemosphere 1:10.
HU, X.; LI, A.; FAN, J.; DENG, C.; ZHANG, Q. 2008. Biotreatment of q-nitrophenol and nitrobenzene in mixed
wastewater through selective bioaugmentation. Bioresour. Technol. 99: 4529-4533.
ICHIDA, J.M.; KRIZOVA, L.; LEFEVRE, C.A.; KEENER, H.M.; ELWELL, D.L.; BURTT JR., E.H. 2001. Bacterial
inoculum enhances keratin degradation and biofilm formation in poultry compost. Journal of Microbiological Methods
:199-208.
LEALEM, F.; GASHE, B. A. 1994. Amylase production by a gram-positive bacterium isolated from fermenting tef
(Eraglostis tef). J. Appl. Bacteriol. 77 (3): 348 352.
LEFEBVRE, X.; PAUL, E.; MAURET, M. 1998. Kinetic characterization of saponified domestic lipid residues aerobic
biodegradation. Water Research 32: 3031-3038.
LIU, Y.; KANG, X., LI, X.L.; YUAN, Y. 2015. Performance of aerobic granular sludge in a sequencing batch bioreactor
for slaughterhouse wastewater treatment. Bioresource technology 190:487-91
MARONE, A.,;MASSINI, G.; PATRIARCA, C.; SIGNORINI, A.; VARRONE, C.; IZZO, G. 2012. Hydrogen production
from vegetable waste by bioaugmentation of indigenous fermentative communities. international journal of hydrogen
energy 37 (7):5612-5622.
MARTIN-RYALS, A.; SCHIDEMAN, L.; LI, P.; WILKINSON, H.; WAGNER, R. 2015. Improving anaerobic digestion of
a cellulosic waste via routine bioaugmentation with cellulolytic microorganisms. Bioresource technology 189:62-70.
MOHAN, S.V.; RAO, N.C.; PRASAD, K.K.; SARMA, P.N. 2005. Bioaugmentation of an anaerobic sequencing batch biofilm reactor (AnSBBR) with immobilized sulphate reducing bacteria (SRB) for the treatment of sulphate bearing chemical wastewater. Process Biochemistry 40 (8):2849-2857.
MUÑOZ, D.M. 2005. Sistema de tratamiento de aguas residuales de matadero: Para una población menor 2000
habitantes [System of residual water treatment of slaughter house: For a smaller population 2000 inhabitants. Facultad
de Ciencias Agropecuarias 3 (1):87-98.
PABÓN, S. L.; GÉLVEZ, J.H.S. 2009. Arranque y operación a escala real de un sistema de tratamiento de lodos
activos para aguas residuales de matadero. Ingeniería e Investigación 29 (2):53-58.
PALATSI, J.; VIÑAS, M.; GUIVERNAU, M.; FERNANDEZ, B.; FLOTATS, X . 2011. Anaerobic digestion of
slaughterhouse waste: Main process limitations and microbial community interactions. Bioresource Technology
:2219–2227.
PARK, D.; LEE, D.S.; KIM, Y.M.; PARK, J.M. 2008. Bioaugmentation of cyanide-degrading microorganisms in a fullscale
cokes wastewater treatment facility. Bioresour. Technol. 99:2092–2096.
TEATHER, R. M.; WOOD, P. J. 1982. Use of congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization
of cellulolytic bacteria from the bovine rumen. Appl. Environ. Microbiol. 43 (4):777-780.
VAN DER GAST, C.J.; WHITELEY, A.S.; THOMPSON, I.P. 2004. Temporal dynamics and degradation activity of a
bacterial inoculum for treating waste metal-working fluid. Environmental Microbiology 6:254–263.
VAVILIN, A. .; FERNANDEZ, B.; PALATSI, J.; FLOTATS, X.. 2008. Hydrolysis kinetics in anaerobic degradation of
particulate organic material Waste Manag. 28 (6):939–951
VIDAL, G.; CARVALHO, A.; MÉNDEZ, R.; LEMA, J.M. 2000. Influence of the content in fats and proteins on the anaerobic biodegradability of dairy wastewaters. Bioresource Technology 74:231-239.
YU, Z.T.; MOHN, W.W. 2002. Bioaugmentation with the resin-acid degrading bacteria Zoogloea resiniphila DhA-35 to counteract pH stress in an aerated lagoon treating pulp and paper mill effluent. Water Res. 36:2793–2801.
Citado por
